在早期胚胎發(fā)育過程中,胚胎著床是一個極為關鍵的生物學事件。其間胚胎植入母體子宮,建立母胎交流界面,這是后續(xù)發(fā)育的基礎。然而這一過程充滿風險,臨床上常常出現(xiàn)因著床失敗導致的生育問題。由于該過程極為瞬時和動態(tài),胚胎著床方面的研究仍是一個“黑匣子”。

miRNA是真核生物中保守的轉錄后調控機制,并在著床過程中起到重要作用。DGCR8是miRNA合成通路的核心蛋白,它與DROSHA一起組成Microprocessor復合體,切割pri-miRNA上的莖環(huán)結構形成pre-miRNA,pre-miRNA再進一步被加工為成熟的miRNA。1 DCGR8敲除后,胚胎無法發(fā)育至著床后階段,暗示著DGCR8在著床過程中起到重要作用,然而該致死表型卻不能完全用miRNA的缺陷來解釋。2,3

與尚不清楚的著床期過程相比,人們對于著床前胚胎和著床后的胚胎已有廣泛的研究,這主要得益于體外干細胞模型的建立。由著床前胚胎分離得到的干細胞被稱為na?ve mESCs(小鼠胚胎干細胞),而著床后胚胎分離得到的干細胞被稱為Formative/Primed mESCs,這幾種細胞已被廣泛應用各種發(fā)育問題的研究。4,5?北京大學生命科學學院/北大-清華生命科學聯(lián)合中心/北京大學核糖核酸北京研究中心的杜鵬教授課題組在2018年捕捉到了一種介于naive和Formative/primed多能性的中間態(tài)多能性干細胞,稱為Poised mESCs。6,7 該狀態(tài)代表了處于著床期的胚胎,且由一組特異的miRNA所調控。

2024年7月1日,杜鵬課題組在Molecular cell雜志在線發(fā)表了題為“A transient transcriptional activation governs unpolarized-to-polarized morphogenesis during embryo implantation”的研究論文。在本研究中,研究者運用na?ve-poised-formative/Primed等干細胞模型,結合實驗室先前在miRNA調控方面的研究基礎,解釋了驅動著床期胚胎形狀建成的分子驅動力,主要內容概括如下:

1. DGCR8作為miRNA合成通路的核心蛋白,可以發(fā)揮不依賴于miRNA的轉錄抑制的非經典功能。在na?ve mESCs中(代表著床前胚胎),DGCR8可以結合位于mRNA上短的莖環(huán)結構,招募并隔離轉錄激活子FLII,抑制轉錄進行。在Poised mESCs中(代表著床中胚胎),ERK通路瞬時激活,使得FLII受到磷酸化修飾并與DGCR8解離,進而與轉錄因子JUN結合并激活細胞遷移基因的轉錄。著床后ERK通路迅速失活(Formative mESCs),DGCR8重新結合并抑制FLII。因此DGCR8/FLII/JUN在ERK通路的介導下,在著床期特異地介導了一個瞬時轉錄激活事件的發(fā)生(圖1)。

2. 該轉錄激活事件控制了胚胎著床期由無序狀態(tài)到極化狀態(tài)的形態(tài)轉變,且該事件在人和小鼠是保守的(圖1)。

北京大學生命科學學院杜鵬課題組發(fā)現(xiàn)由DGCR8/FLII/JUN介導的瞬時轉錄激活事件調控著床期胚胎的形態(tài)轉變-肽度TIMEDOO

圖1. 在著床前(naive)-著床中(Poised)-著床后(Formative)發(fā)育過程中,DGCR8/FLII/JUN在ERK通路調控下介導瞬時轉錄激活事件的發(fā)生,進而調控著床期胚胎形態(tài)轉變

本研究具體結論如下:

一、在na?ve mESCs中,DGCR8通過結合mRNA上的莖環(huán)結構,招募并抑制轉錄激活子FLII。

基于前期的na?ve小鼠胚胎干細胞中DGCR8互作蛋白數(shù)據(jù)/Co-IP/Pull down,作者發(fā)現(xiàn),DGCR8與轉錄激活子FLII存在直接的蛋白相互作用。然而FLII并不參與miRNA合成通路。進一步的通過遺傳學手段,作者發(fā)現(xiàn):DGCR8和FLII共同在轉錄水平上控制了一組不受miRNA調控的基因,該類基因主要參與細胞遷移等活動,稱為非miRNA靶向基因。DGCR8可以抑制,但FLII可以激活此類基因的轉錄。

為了進一步研究DGCR8如何抑制這類基因的轉錄,在na?ve小鼠胚胎干細胞中,作者通過eCLIP實驗鑒定了DGCR8/FLII的RNA結合靶點,同時在eCLIP實驗中還摻入了S4U,可以同時鑒定出新生的RNA(nascent RNA)。作者發(fā)現(xiàn)DGCR8和FLII同時結合了大量的靶基因的新生mRNA,且DGCR8結合區(qū)域傾向于形成莖環(huán)結構。該莖環(huán)結構顯著短于pri-miRNA上的莖環(huán)結構,并不能被DGCR8和DROSHA形成的復合體結合并切割。通過敲除DGCR8所結合的位于靶基因mRNA上的莖環(huán)結構,靶基因的轉錄抑制狀態(tài)被解除。這證明DGCR8確實通過結合mRNA上的莖環(huán)結構來抑制轉錄。

綜上,這說明DGCR8一方面和DROSHA結合負責pri-miRNA的切割,一方面結合在靶基因mRNA上的莖環(huán)結構,招募并抑制轉錄激活子FLII,從而抑制轉錄的進行(圖2)。

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圖2. 在na?ve(代表著床前胚胎)小鼠胚胎干細胞中,DGCR8結合靶基因mRNA上的莖環(huán)結構,招募并隔離轉錄激活子FLII,抑制轉錄進行

二、FLII在Poised mESCs(代表著床期胚胎)中與DGCR8解離,并與轉錄因子JUN結合,激活基因轉錄。

通過na?ve-poised(著床前→著床中)轉變體系,作者發(fā)現(xiàn):FLII在只有在Poised時期(著床中)才具有轉錄激活活性,而在na?ve時期(著床前)則沒有。與此對應的是FLII在Poised時期解除了與DGCR8的互作,同時也不再結合靶基因的mRNA。這說明FLII與DGCR8的解離是FLII具有轉錄激活活性的關鍵條件。通過一系列生化實驗,作者證明na?ve-poised轉變過程中,ERK通路瞬時激活,磷酸化FLII,使得FLII與DGCR8不再結合。同時磷酸化的FLII會與轉錄因子JUN互作增強(圖3)。進一步的通過JUN的CUT&Tag實驗發(fā)現(xiàn),JUN可以廣泛結合在FLII激活的靶基因上,且JUN在Flii敲除中的細胞中無法結合靶基因。這說明JUN只有與FLII結合才能夠結合靶基因,激活其轉錄(圖3)。

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圖3. 在Poised(代表著床中的胚胎)小鼠胚胎干細胞中,ERK激活誘導DGCR8與FLII的解離,促進FLII與JUN形成新的復合體激活基因轉錄

三、Poised mESCs代表小鼠和人的著床期胚胎,這一時期的胚胎正經歷無序到極化的形態(tài)轉變。

通過與體內胚胎的轉錄組比較,作者發(fā)現(xiàn)Poised ESCs的轉錄組與小鼠與人的著床期胚胎轉錄組最為相似(小鼠為E4.75天,人為E8天)。這一時期胚胎的上胚層細胞逐漸從無序狀態(tài)變成玫瑰花環(huán)樣的極化結構。且在體外培養(yǎng)的著床期小鼠胚胎中,能夠觀察到JUN和其他靜息態(tài)多能性標記基因的表達,進一步證明了已有結論。通過體外的模擬無序到極化的形態(tài)轉變體系,作者發(fā)現(xiàn)抑制該轉錄激活事件都會導致無序到極化結構形態(tài)轉變的失敗。因此,本文中鑒定到的轉錄激活事件對應于著床期胚胎,而激活基因以細胞遷移相關基因為主,則對應著這一時期細胞的形態(tài)轉變(圖4)。

綜上,該研究發(fā)現(xiàn)了DGCR8獨立于miRNA之外的轉錄抑制功能,并與FLII/JUN一起,在ERK通路的控制下,控制了著床期的瞬時轉錄激活事件,進而控制這一時期的形態(tài)建成。

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圖4. Poised ESCs(靜息態(tài)多能性干細胞)代表著床期的小鼠/人胚胎,其epiblast正經歷無序到極化的形態(tài)轉變。本文鑒定的轉錄激活事件對應于這一形態(tài)轉變過程

杜鵬為該論文的通訊作者。北京大學生命科學學院博士后呂學暉、崔英姿,前沿交叉學科研究院博士后孔寅飛為本文的并列第一作者。北京大學博士畢業(yè)生楊敏、博士后申輝、博士后李詩雨、已出站博士后翁建莉,北京大學張哲研究員及其博士生廖述筠,中國科學院動物研究所王皓毅研究員及其博士畢業(yè)生安辰瑞,山東大學李艷研究員對本文有重要貢獻。該項工作得到了國家重點研發(fā)計劃,國家自然科學基金的支持。

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來源:北京大學